Western Blot（蛋白質(zhì)印跡或免疫印跡）技術，以蛋白質(zhì)為檢測對象，“探針”是抗體，“顯色”用標記的二抗。實驗采用聚丙烯酰胺凝膠電泳（PAGE）將樣品蛋白質(zhì)分離，再轉(zhuǎn)移到固相載體（PVDF尼龍膜或NC膜）上；固相載體以非共價鍵形式吸附蛋白質(zhì)，且保持電泳分離的多肽類型及其生物學活性不變；然后以固相載體上的蛋白質(zhì)或多肽作為抗原，與其對應的抗體（一抗）發(fā)生免疫反應，特異性一抗再與和酶耦聯(lián)的第二抗體反應，zui后在酶的作用下，導致底物顯色或化學發(fā)光顯影，來檢測電泳分離的特異性目的靶蛋白。
蛋白質(zhì)印跡技術結(jié)合了凝膠電泳分辨力高和固相免疫測定特異性高、敏感等諸多優(yōu)點，能從復雜混合物中對特定抗原進行鑒別和定量檢測。
實驗試劑
1. SDS-PAGE試劑。
2. 勻漿緩沖液：1.0mol/L Tris-HCl(pH6.8)1.0ml；10%SDS 6.0ml；β-巰基乙醇 0.2ml；ddH2O 2.8ml。
3. 固相載體：PVDF尼龍膜或NC膜（硝酸纖維素薄膜）。
4. 轉(zhuǎn)膜緩沖液：甘氨酸 2.9g；Tris 5.8g；SDS 0.37g；甲醇200ml；加ddH2O定容至1000ml (48mmol/L Tris.HCl，39mmol/L甘氨酸，0.037％ SDS)。
5. PBS-T(pH7.4)： 0.01mol/L PBS（NaCl 8.0g；KCl 0.2g；Na2HPO4 1.44g；KH2PO40.24g）；1g吐溫20，加ddH2O至1000ml。
6. 膜染色液：考馬斯亮藍 0.2g；甲醇80ml；乙酸2ml；ddH2O 118ml。
7. 封閉液（5%脫脂奶粉，現(xiàn)配）：脫脂奶粉1.0g 溶于20ml的0.01mol/L PBS中。
8. 顯色液：化學發(fā)光劑（ECL）或DAB 6.0mg，0.01mol/L PBS 10.0ml，硫酸鎳胺0.1ml；H2O2 1.0μl。
實驗設備
1. 電泳儀
2. 搖床等
實驗材料
待測蛋白質(zhì)或基因表達產(chǎn)物。
實驗步驟
1. 蛋白質(zhì)樣品的制備與SDS-PAGE分離
１) 蛋白質(zhì)樣品獲得
a. 細菌誘導表達后，樣品一般直接用SDS凝膠加樣緩沖液裂解；
b. 哺乳動物組織通?？蓹C械分散（機械或超聲波室溫勻漿0.5～1min）并直接溶于SDS凝膠加樣緩沖液，然后4℃，13 000g離心15min，取上清液作為樣品；
c. 組織培養(yǎng)的單層細胞可用勻漿緩沖液裂解，也可直接在SDS凝膠加樣緩沖液中裂解；制備好的樣品用做SDS- PAGE分析。
２) 電泳 按常規(guī)方法進行SDS-PAGE。
2. 蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到NC膜上（半干式轉(zhuǎn)移）
１) 平衡凝膠：用轉(zhuǎn)膜緩沖液平衡，5min×3次。
２) 膜處理: 將濾紙和NC膜，一同在轉(zhuǎn)膜緩沖液中浸泡10min。
３) 轉(zhuǎn)膜：
a. 轉(zhuǎn)膜裝置從下至上依次按陽極碳板、3層厚濾紙、PVDF尼龍膜、凝膠、3層厚濾紙、陰極碳板的順序放好，濾紙、凝膠、PVDF尼龍膜對齊，每一步去除氣泡，上壓500g重物，將碳板上多余的液體吸干。
b. 用支架夾緊上述各層，置電轉(zhuǎn)移槽中，NC膜一側(cè)靠正極，凝膠一側(cè)靠負極。接通電源，40V、約1.轉(zhuǎn)移1.5～6h。轉(zhuǎn)移時間長短依靶蛋白分子量大小來調(diào)節(jié)。
c. 轉(zhuǎn)移結(jié)束后，斷開電源將膜取出，割取待測膜條做免疫印跡。
d. 將有蛋白Marker的條帶染色，放入膜染色液中50s后，在50%甲醇中多次脫色，至背景清晰，然后用雙蒸水洗，風干夾于兩層濾紙中保存，留與顯色結(jié)果作對比。
3. 免疫探測 包括被轉(zhuǎn)印到膜上的靶抗原與*抗體（特異抗體）反應、與酶標第二抗體 (抗抗體) 反應，以及用酶相應的底物處理后進行靶蛋白（抗原）信號檢測。
1) 用0.01mol/L PBS洗膜，5min×3次。
2) 加入封閉液（5％脫脂奶粉或2％牛血清白蛋白），浸泡被轉(zhuǎn)印膜，室溫或37℃（平緩搖動）反應1～3h，以封閉轉(zhuǎn)印膜上一些非特異性蛋白質(zhì)的潛在結(jié)合位點，避免非特異性反應。
3) 棄封閉液，用0.01mol/L PBS洗膜，5min×3次，振蕩。
4) 將封閉好的轉(zhuǎn)印膜浸入*抗體溶液（按合適稀釋比例，用1/2量0.01mol/L PBS加1/2量封閉液稀釋）中，抗體液用量約0.2ml/cm2，37℃反應1～2h或4℃反應12h以上，保持平緩搖動。陰性對照，以1%BSA取代一抗，其余步驟與實驗組相同。
5) 棄一抗，用0.01mol/L PBS分別洗膜，10min×3次，振蕩。
6) 加入辣根過氧化物酶（HP）偶聯(lián)的二抗溶液［稀釋方法同（4）］，室溫下反應1～2h，保持平緩搖動。
7) 棄二抗，用0.01mol/L PBS洗膜，10min×4次，振蕩。
4. 靶蛋白（抗原）檢測
1) 化學發(fā)光劑（ECL）檢測轉(zhuǎn)印膜上靶蛋白信號（近年多用），具體操作按ECL說明書進行，然后于暗室中用膜對X光片曝光，將所得Ｘ光片上的信號條帶進行灰度掃描，計算其積分光密度值。新問世的“化學發(fā)光數(shù)字成像分析儀”已將曝光、掃描與光密度分析集于一體，既減少信號損失，又方便結(jié)果保存，還節(jié)省膠片。
2) 顯色反應檢測轉(zhuǎn)印膜上靶蛋白信號（以往常用），將膜放入相應顯色劑（DAB）中，避光顯色至出現(xiàn)條帶時放入雙蒸水中終止反應。陽性反應將在靶蛋白相對應的位置上出現(xiàn)有顏色的條帶。
檢測完畢后，將NC膜浸泡于洗脫液（100mmol/L-ME， 20g/L SDS，62.5mmol/L Tris-HCl，pH6.7）中，50℃，振蕩30min，以去除膜上抗體，供再次檢測用。
注意事項
1. 一抗的選擇是影響免疫印跡成敗的主要因素。多克隆抗體結(jié)合抗原能力較強、靈敏度高，但易產(chǎn)生非特異性的背景；單克隆抗體識別抗原特異性較好，但可能不識別在樣品制備時因變性而失去了空間構型的抗原表位，且易發(fā)生交叉反應。因此，兼有多克隆抗體和單克隆抗體優(yōu)點的混合單克隆抗體近年特別被推薦，它是由一組能與抗原分子中的不同且不易變性的抗原表位結(jié)合并不易出現(xiàn)交叉反應的單克隆抗體混合構成。
2. 如果反應靈敏度不高，可增加凝膠的厚度到1.5mm（厚度超過2.0mm時，凝膠轉(zhuǎn)移效率受限）；也可在電泳條帶不發(fā)生變形的前提下，盡量提高蛋白樣品的上樣量。
3. 濾紙/凝膠/轉(zhuǎn)印膜/濾紙夾層組合中不能存在氣泡，可用玻璃棒在夾層組合上滾動將氣泡趕出，以提高轉(zhuǎn)膜效率；上下兩層濾紙不能過大，避免導致直接接觸而引起短路。
4. 如果出現(xiàn)非特異性的高背景，可觀察僅用二抗單獨處理轉(zhuǎn)印膜所產(chǎn)生的背景強度，若高背景確由二抗產(chǎn)生，可適當降低二抗?jié)舛然蚩s短二抗孵育時間；并考慮延長每一步的清洗時間。
5. 一抗與二抗的稀釋度、作用時間和溫度對檢測不同的蛋白要求不同，須經(jīng)預實驗確定*條件。
6. 一般情況使用0.45μm的NC膜，0.1～0.2μm的小孔徑膜只適合于分子量小于20kD的蛋白質(zhì)。
7. PVDF尼龍膜較NC膜柔軟、結(jié)實、靈敏度高，易于操作且蛋白質(zhì)結(jié)合能力強（PVDF膜可結(jié)合蛋白質(zhì)480μg/cm2，而NC膜只能結(jié)合蛋白質(zhì)80μg /cm2）；缺點是PVDF尼龍膜背景也高，需要加強封閉；此外，PVDF尼龍膜若在使用前先行甲醇處理5～10s，以活化膜表面的正電基團，使它更容易與帶負電的蛋白質(zhì)結(jié)合，可提高蛋白質(zhì)在膜上的保留指數(shù)。
8. 使用化學發(fā)光檢測時，試劑須按需要量臨用前配置混合。
